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细胞相关> 细胞标记与染色> 荧光染色
产品编号: C2221S
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C2221S 微丝绿色荧光染色试剂盒(Actin-Tracker Green-488) 20-200次 698.00元

碧云天的微丝绿色荧光染色试剂盒(Actin-Tracker Green-488),即Microfilament Green Fluorescence Staining Kit with Actin-Tracker Green-488,是基于微丝绿色荧光探针Actin-Tracker Green-488,主要用于培养细胞或组织切片的Actin特异性荧光染色的试剂盒。本试剂盒适用于荧光显微镜、激光共聚焦显微镜、流式细胞仪等荧光检测设备。

Actin-Tracker Green-488为荧光染料AF488标记的鬼笔环肽(phalloidin, 又称鬼笔毒素或毒蕈肽),即phalloidin-AF488,最大激发波长为495nm,最大发射波长为518nm。AF488也被称为Alexa Fluor 488。Actin-Tracker Green-488的荧光光谱和FITC比较接近,可以用FITC的检测条件进行检测。

鬼笔环肽是从担子类真菌死亡帽蘑菇(death cap mushroom)鬼笔鹅膏(Amanita phalloides)中分离出来的一种多肽,可特异性与真核生物的丝状的肌动蛋白(filamentous actin, F-actin)结合,从而阻止肌动蛋白解聚。微丝(microfilaments)是由肌动蛋白分子螺旋状聚合成的纤丝,所以鬼笔环肽最终可以破坏细胞内微丝的聚合-解聚动态平衡,而对细胞产生毒性。利用鬼笔环肽具有使微丝保持稳定这一生物学特点,使用荧光染料标记的鬼笔环肽可以非常方便的显示细胞内微丝的形态和分布,从而使微丝荧光探针广泛应用于生物、医学研究[1-2]。

本试剂盒中的Actin-Tracker Green-488有以下特点。用量少:Actin-Tracker Green-488可在纳摩尔水平染色F-actin;不区分种属:不同于抗体,鬼笔环肽与F-actin的结合力在不同物种间没有显著变化,非特异性染色基本可以忽略,染色和未染色区域具有明显的辨识度;对F-actin与其它蛋白结合的影响小:Actin-Tracker Green-488直径大约为1.2~1.5nm,分子量小于2000Da,与F-actin结合后不影响与多种肌动蛋白结合蛋白结合,包括肌球蛋白、原肌球蛋白和后肌钙蛋白等;基本不影响F-actin的功能:Actin-Tracker Green-488标记后的肌动蛋白丝仍旧保持功能,标记的肌纤维能够收缩,标记的肌球蛋白可以继续移动;亲和力一致:在各种植物细胞或动物细胞中,Actin-Tracker Green-488对大、小微丝具有相似的亲和力,每个肌动蛋白可以结合一个鬼笔环肽分子,因此Actin-Tracker Green-488也可用于对细胞中F-actin进行定量研究。

本试剂盒可以用于细胞或组织内的微丝的荧光检测。使用本试剂盒染色细胞内微丝的效果参考图1。

图1.碧云天微丝绿色荧光染色试剂盒(Actin-Tracker Green-488) (C2221)染色NRK-52E (大鼠肾小管上皮细胞)的效果图。经Actin-Tracker Green-488染色的NRK-52E细胞可见绿色细丝状形态微丝(图B),Hoechst 33342染色的NRK-52E细胞的细胞核呈蓝色荧光(图C),微丝绿色荧光和细胞核蓝色荧光的叠加(Merge)效果见图D。本图仅作参考,不同的样品不同的检测条件,实际获得的结果可能有所差别。

对于96孔板中的样品,按照每孔使用100μl染色液计算,本试剂盒小包装可以进行200次检测;如果用于流式细胞仪检测,按照每个样品的检测体系体积为0.5ml时,本试剂盒小包装可以进行40次检测;对于6孔板中的贴壁培养细胞样品,按照每孔使用1ml染色液计算,本试剂盒小包装可以进行20次检测。

包装清单:
产品编号 产品名称 包装
C2221S-1 Actin-Tracker Green-488 (100X) 0.2ml
C2221S-2 Hoechst 33342 (1000X) 20μl
C2221S-3 Fix Solution 20ml
C2221S-4 Assay Buffer 50ml
说明书 1份
保存条件:

-20ºC保存,一年有效。其中Actin-Tracker Green-488 (100X)和Hoechst 33342 (1000X)须避光保存。

注意事项:

Actin-Tracker Green-488 (100X)反复冻融可能会影响其检测效果,首次使用解冻后请适当分装。

对于微量的液体,每次使用前先离心数秒钟,使液体充分沉降到管底。

荧光染料均存在淬灭问题,请尽量注意避光,以减缓荧光淬灭。

Phalloidin有一定毒性(LD50为2mg/kg体重),1ml Actin-Tracker Green中的phalloidin少于0.2mg,使用时请注意适当防护。

需自备盖玻片和载玻片(可以向碧云天订购)。

本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。

为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

使用说明:
1.染色工作液的配制。
对于6、12、24、96孔板,每孔所需的染色工作液(Working Solution)的用量分别为1ml、500μl、200μl和100μl。根据样品数量,计算所需检测工作液的体积。以96孔板每孔100μl染色工作液的体系为例,参考下表配制检测工作液。
Samples 1 5 10 20 100
Actin-Tracker Green-488 (100X) 1μl 5μl 10μl 20μl 100μl
Hoechst 33342 (1000X) 0.1μl 0.5μl 1μl 2μl 10μl
Assay Buffer 100μl 500μl 1ml 2ml 10ml
Working Solution ~100μl ~500μl ~1ml ~2ml ~10ml
注1:染色工作液需现用现配,并一次性使用完毕,不可冻存。
注2:染色工作液中的Actin-Tracker Green-488 (100X)和Hoechst 33342 (1000X)的最终浓度需根据不同细胞系和实验体系通过预实验进行优化,上表中的用量为推荐用量,可以在0.5-2X范围内摸索最佳工作浓度。
注3:若需同时进行其它细胞器探针染色,可在染色工作液配制完成后按照比例添加目的探针,同时进行染色。
注4:本试剂盒中提供的Assay Buffer中含有Actin-Tracker Green-488染色的关键组分,效果通常比PBS或HBSS更好,用其它缓冲液稀释Actin-Tracker Green-488可能会导致染色效果不佳。
2.荧光显微镜检测。
a.接种培养。将细胞接种于96孔板等多孔板或细胞培养皿中,按照实验设计对细胞进行适当处理。
b.洗涤(选做)。对于贴壁细胞,吸除培养液,用PBS洗涤细胞1次;对于悬浮细胞,250-1000×g室温离心5分钟,吸除上清,用PBS洗涤1次。吸除培养液和PBS时最好使用真空泵。在能充分吸净残留液体的情况下,可以不使用PBS洗涤。
c.染色前准备。加入适当体积的Fix Solution室温处理细胞15分钟,用PBS洗涤1次。
d.染色。加入适当体积的染色工作液。通常96孔板每孔加入100μl,24孔板每孔加入250μ1,12孔板每孔加入500μl,6孔板每孔加入1ml。室温避光孵育15分钟。孵育时间可在10-30分钟之间进行调整。
注1:如果是首次实验不能确定孵育时间,建议先尝试室温避光孵育15分钟,观察荧光效果。如果正常细胞染色过强,则适当缩短时间;如果荧光强度太弱,则适当延长时间。
注2:孵育后也可用PBS或HBSS洗涤1-3次。
e.检测。孵育结束后,即可在荧光显微镜下观察染色效果(Actin-Tracker Green-488为绿色荧光, Ex/Em=495/518nm)。
3.流式细胞仪检测。
a.接种培养。将细胞接种于6孔板或适当的细胞培养器皿中,按实验设计对细胞进行适当处理。
b.细胞准备。贴壁细胞胰酶消化后用培养液重悬,并用PBS洗涤1次;悬浮细胞250-1000×g室温离心5分钟,吸除上清,用PBS洗涤1次。每个样品推荐的细胞用量为50-100万个细胞。
c.染色前准备。加入适当体积的Fix Solution重悬细胞,室温处理细胞15分钟,250-1000×g室温离心5分钟,吸除上清,用PBS洗涤1次。
d.染色。加入0.5ml染色工作液,重悬为单细胞悬液。室温避光孵育15分钟。孵育时间可在10-30分钟之间进行调整。
注1:如果是首次实验不能确定孵育时间,建议先尝试室温避光孵育15分钟,观察荧光效果。如果正常细胞染色过强,则适当缩短时间;如果荧光强度太弱,则适当延长时间。
注2:孵育后也可用PBS或HBSS洗涤1-3次。
e.检测。孵育完成后,可以直接进行流式细胞仪检测,也可以250-1000×g室温离心5分钟沉淀细胞,吸净液体后每个样品加入0.5ml Assay Buffer或其它缓冲液重悬细胞后用流式细胞仪检测(Actin-Tracker Green-488为绿色荧光, Ex/Em=495/518nm, 推荐用FITC (Ex/Em=488/525)通道进行检测)。
注:由于流式细胞仪比较灵敏,使用的荧光探针浓度可能要比荧光显微镜检测时要低,此时可根据细胞类型和染色效果对Actin-Tracker Green-488的稀释倍数进行适当调整。
参考文献:
1.Mayr S, Hauser F, Peterbauer A, et al. Int J Mol Sci. 2018. 19(4):1150.
2.Schröder SK, Tag CG, Weiskirchen S, Weiskirchen R. Methods Mol Biol. 2023. 2669:55-66.
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