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总SOD活性检测试剂盒(NBT法)
产品编号: S0109
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S0109 总SOD活性检测试剂盒(NBT法) 100次 398.00元

碧云天的总SOD活性检测试剂盒(NBT法)(Total Superoxide Dismutase Assay Kit with NBT)是一种基于NBT的显色反应,通过比色来检测细胞、组织或其它样品中SOD即超氧化物歧化酶活性的试剂盒。
超氧化物歧化酶(Superoxide Dismutase,SOD)能催化超氧化物阴离子发生歧化作用,生成过氧化氢(H2O2)和氧气(O2),是生物体内一种重要的抗氧化酶。
本试剂盒采用经典的氮蓝四唑(NBT)显色法。通过黄嘌呤(Xanthine)及黄嘌呤氧化酶(Xanthine Oxidase, XO)反应系统产生超氧阴离子(O2-.),将氮蓝四唑还原为蓝色的甲臜(formazan),后者在560nm处有强吸收。而SOD可清除超氧阴离子,从而抑制了甲臜的形成。反应液蓝色愈深,说明超氧化物歧化酶活性愈低,反之则酶活性愈高。据此通过比色分析就可以计算出超氧化物歧化酶活性水平。本试剂盒的检测原理图如下:

     图1. 基于黄嘌呤氧化酶偶联反应体系和NBT的SOD酶活力检测原理图。XO:xanthine oxidase。
本试剂盒的检测不受样品中过氧化氢的干扰。很多细胞和组织样品中含有内源性的过氧化氢,会干扰SOD的检测。本试剂盒通过添加适量过氧化氢酶等特殊方法,能有效去除常规样品中过氧化氢的干扰。例如,对于SOD标准品的检测,标准品中添加高达0.1mM的过氧化氢时,对于检测结果仍无显著影响。
本试剂盒可以检测细胞或组织匀浆液上清、全血、红细胞抽提物、血清等生物样品中的SOD活性。一个试剂盒共可以进行100次检测。
包装清单:


产品编号 产品名称 包装
S0109-1 SOD检测缓冲液 70ml
S0109-2 NBT 100μl
S0109-3 酶溶液 100μl
S0109-4 反应启动液(40X) 60μl
说明书 1份

保存条件:
-20℃保存,半年有效。S0109-2 NBT需避光保存。
注意事项:
待测样品-70℃可保存1个月。需注意反复冻融会导致SOD部分失活。
细胞或组织等样品制备时不能采用含有Triton X-100等去垢剂的溶液,否则会干扰本试剂盒的检测。
抗氧化物会对本试剂盒的检测产生干扰,例如0.1mM ascorbic acid,5mM GSH都会使测定出来的吸光度显著升高。此时尽管样品没有颜色,如果设置了使用说明中的空白对照3,就可以消除样品中的抗氧化物的干扰。
      本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。 

使用说明:
1. 样品的准备:
a. 细胞样品的准备:收集细胞,用4℃或冰浴预冷的PBS或生理盐水洗涤1-2遍。沉淀用预冷的PBS在4℃或冰浴进行匀浆(可以使用玻璃匀浆器或各类常见电动匀浆器)。随后匀浆液4℃离心,取上清作为待测样品。
b. 组织样品的准备:动物用生理盐水(0.9% NaCl,含有0.16mg/ml肝素钠)灌流清除血液后获取组织样品。取适量的组织样品,加入4℃或冰浴预冷的PBS在4℃或冰浴进行匀浆(可以使用玻璃匀浆器或各类常见电动匀浆器)。随后匀浆液4℃离心,取上清作为待测样品。
c. 血浆或红细胞样品的准备:用抗凝管收集血液,颠倒混匀。4℃ 600g离心10分钟,移取上清至另一新的1ml离心管中,适量生理盐水稀释后即可作为血浆样本进行检测。红细胞样品可以参考步骤1a细胞样品的制备方法,或其它不含Triton X-100等去垢剂的样品制备方法。
d.  上述样品准备完毕后可以用碧云天生产的BCA蛋白浓度测定试剂盒(P0009/P0010/P0010S/P0011/P0012/P0012S)测定蛋白浓度。通常10-20微克蛋白的细胞或组织匀浆液样品中的SOD平均活力约1个活力单位左右(不同细胞和组织的差异会比较大,该活力范围仅作为初步的参考)。每种样品准备20-100微克蛋白量通常已经足够用于后续检测。
e. 根据蛋白浓度和预计的蛋白使用量,用本试剂盒提供的SOD检测缓冲液适当稀释样品。例如,小鼠肝脏组织10%匀浆液(组织和匀浆液的重量比为10%)上清,通常需要稀释10-100倍。准备好的样品如果当天测定,可以冰浴保存;如果当天不能完成测定,可以-70℃冻存,但建议尽量当天完成测定。
2. 试剂盒的准备工作:
a. NBT/酶工作液的配制:按照每个反应160μl的体积配置适量的NBT/酶工作液。均匀混合158μlSOD检测缓冲液、1μl NBT和1μl酶溶液,即可配置成160μl NBT/酶工作液。根据待检测样品(包括标准品)的数量,配置适量的NBT/酶工作液。具体配置方法可以参考下表。配制好的NBT/酶工作液4℃或冰浴保存,可以在当天使用,但建议尽量现配现用。注意:由于酶溶液的用量较少且易沉降,必须注意在使用前先轻轻离心一下,然后适当混匀后再使用。

待测样品数量 1 10 20 50
SOD检测缓冲液(μl) 158 1580 3160 7900
NBT(μl) 1 10 20 50
酶溶液(μl) 1 10 20 50
NBT/酶工作液(μl) 160 1600 3200 8000

b.反应启动工作液的配制:把试剂盒中的反应启动液(40X)融解后混匀,按照每1μl反应启动液(40X)加入39μl SOD检测缓冲液的比例进行稀释,混匀后即为反应启动工作液。根据待检测样品(包括标准品)的数量,配置适量的反应启动工作液。配制好的反应启动工作液4℃或冰浴保存,可以在当天使用,但建议尽量现配现用。
c. (可选做)SOD标准品准备:需自备SOD标准品,用本试剂盒提供的SOD检测缓冲液将SOD标准品稀释至如下系列浓度:200U/ml,100U/ml,50U/ml,20U/ml,10U/ml,5U/ml,2U/ml。在随后的检测中可以各取20微升,参考样品进行检测。说明:为避免稀释后SOD酶活性的下降, SOD标准品宜现稀释现使用;本试剂盒对于SOD的检测并不需要SOD作为标准品,但可以使用SOD标准品作为阳性对照或作为对SOD活性定量的参考。
3. 样品测定:
a. 参考下表使用96孔板设置样品孔和各种空白对照孔。并按下表依次加入待测样品和其它各种溶液。加入反应启动工作液后充分混匀。注意:加入反应启动工作液后反应即会开始,可以在低温操作或用排枪操作以减小各孔间因加入反应启动工作液的时间先后差异而导致的误差。


样品(Sample) 空白对照1(Blank1) 空白对照2(Blank2) 空白对照3 (Blank3)*
待测样品 20μl 20μl
SOD检测缓冲液 20μl 40μl 20μl
NBT/酶工作液 160μl 160μl 160μl 160μl
反应启动工作液 20μl 20μl

*如果样品有颜色或含有抗氧化物质,则需设置空白对照3;如果样品没有颜色并且也不含有抗氧化物则没有必要设置空白对照3。
b. 37℃孵育30分钟。说明:孵育25至35分钟检测出来的SOD活力无显著差异,但为保证检测结果的一致性,推荐孵育30分钟。
c. 在560nm测定吸光度,可以选择设定600nm (或600nm以上,如650nm)作为参比波长(也称参考波长),560nm吸光度的读数扣除参比波长的吸光度读数即可作为实测读数。
4. 样品中总SOD活力的计算:
a. 抑制百分率的计算:
参考如下计算公式计算抑制百分率:
抑制百分率=[(A空白对照1-A空白对照2)-(A样品-A空白对照3)]/(A空白对照1-A空白对照2)×100%
如果样品没有颜色并且也不含有抗氧化物,则A空白对照2 = A空白对照3,此时可以把计算公式简化为如下形式(简化时可以不设置空白对照3):
抑制百分率=(A空白对照1-A样品)/(A空白对照1-A空白对照2)×100%
如果计算出来的抑制百分率小于30%或大于70%,则通常需要把该样品重新测定。尽量使样品的抑制百分率在30-70%范围内。如果测定出来的抑制百分率偏高,则需适当稀释样品;如果测定出来的抑制百分率偏低,则需重新准备浓度较高的待测样品。
b. SOD酶活力单位的定义:在上述黄嘌呤氧化酶偶联反应体系中抑制百分率为50%时,反应体系中的SOD酶活力定义为一个酶活力单位(unit)。注意:SOD的活力单位的定义方式有很多种,不同的活力单位需根据其定义的不同进行适当换算。
c. SOD酶活力的计算:

图2. 本试剂盒对SOD标准品的检测效果。图A纵坐标ΔA560为孵育30分钟后,空白对照1与SOD标准品孔的吸光度差值。SOD酶活力和ΔA560 (图A)及抑制百分率(图B)呈非线性关系,而1/SOD酶活力和1/抑制百分率成线性关系(图C)。图中数据仅作参考,实际测定获得的标准曲线的斜率和截距可能会因具体反应条件的不同和上图有较明显的差别。

SOD酶活力的计算公式如下:
待测样品中SOD酶活力单位=检测体系中SOD酶活力单位=抑制百分率/(1-抑制百分率)units
例如,当抑制百分率为50%时,待测样品中SOD酶活力单位=50% / (1-50%)units=1 unit;当抑制百分率为60%时,待测样品中SOD酶活力单位=60% / (1-60%)units=1.5 units。
d. 如果样品为细胞或组织的匀浆液,可以根据样品的蛋白浓度和稀释倍数,将SOD活力单位换算为U/g或U/mg蛋白。如果样品为红细胞抽提液,可以根据血红蛋白含量,可换算为U/克血红蛋白或U/毫克血红蛋白。
附1:SOD酶活力计算的参考方案:可以先使用本试剂盒绘制SOD标准品的抑制百分率曲线,然后根据样品检测到的抑制百分率对比标准品的抑制百分率曲线计算出样品中的SOD酶活力单位。本方案仅供参考,使用本试剂盒时不必使用本方案进行检测和计算。此外,本方案需确保标准品的酶活力数据可靠,不会因为标准品的保存问题而导致实际酶活力下降。
附2:SOD酶活力的动力学检测:如果条件许可,使用本试剂盒时也可以使用动力学方法检测SOD的酶活力。通常在步骤3a后可以37℃孵育同时在560nm连续测定吸光度30分钟。根据30分钟内的吸光度变化的斜率计算出抑制百分率:
抑制百分率=[(斜率空白对照1-斜率空白对照2)-(斜率样品-斜率空白对照3)]/(斜率空白对照1-斜率空白对照2)×100%
其余的计算方法同上述非动力学的计算方法。动力学方法的检测和计算更加精确一些,但检测起来相对要麻烦一些。使用本试剂盒通常使用非动力学方法即可。

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使用本产品的文献:
1. Zhao H, Li J, Han B, Li X, Chen J.
J IND MICROBIOL BIOT . 2014 May;41(5):869-78. (IF 2.824)
2. Liu XW, Zi Y, Liu YE, Zhang YB, Xiang LB, Hou MX.
Neurosci Lett . 2015 May 19;595:74-80. (IF 2.274)
3. Yao J, Zou Z, Wang X, Ji X, Yang J.
EVID-BASED COMPL ALT . 2016;2016:3124519. (IF 1.813)
4. Shang B, Shi H, Wang X, Guo X, Wang N, Wang Y, Dong L.
FUND CLIN PHARMACOL . 2016 Apr;30(2):117-27. (IF 2.754)
5. Kong F, Wang H, Guo J, Peng M, Ji H, Yang H, Liu B, Wang J, Zhang X, Li S.
IN VITRO CELL DEV-AN . 2016 May;52(5):568-75. (IF 1.665)
6. Meng J, Lv Z, Qiao X, Li X, Li Y, Zhang Y, Chen C.
Redox Biol . 2016 Dec 28;11:365-374. (IF 9.986)
7. Zhu Z, Fan X, Pan Y, Lu Y, Zeng W.
Cryobiology . 2017 Apr;75:45-51. (IF 2.283)
8. Meng J, Lv Z, Qiao X, Li X, Li Y, Zhang Y, Chen C.
Redox Biol . 2017 Apr;11:365-374. (IF 9.986)
9. Chang W, Bai J, Tian S, Ma M, Li W, Yin Y, Deng R, Cui J, Li J, Wang G, Zhang P, Tao K.
EXP BIOL MED . 2017 May;242(10):1025-1033. (IF 3.139)
10. Li A, Li L, Song K, Wang W, Zhang G.
Ecol Evol . 2017 Jun 30;7(16):6151-6162. (IF 2.392)
11. He J, Jiang YF, Liang L, Wang DJ, Wei WX, Ji PP, Huang YC, Song H, Lu XL, Zhao YX.
J Geriatr Cardiol . 2017 Aug;14(8):515-523. (IF 2.491)
12. Ren M,Wang T,Huang L,Ye X,Han Z
Cell Struct Funct . 2018;43(2):109-117. (IF 2.429)
13. Zhang B,Zhang Z,Ji H,Shi H,Chen S,Yan D,Jiang X,Shi B
Exp Ther Med . 2018 Jan;15(1):1053-1061. (IF 1.785)
14. Zeng X, Yang J, Hu O, Huang J, Ran L, Chen M, Zhang Y, Zhou X, Zhu J, Zhang Q, Yi L, Mi M.
ANTIOXID REDOX SIGN . 2018 Feb 21. (IF 6.323)
15. Lu QB,Wan MY,Wang PY,Zhang CX,Xu DY,Liao X,Sun HJ
Redox Biol . 2018 Apr;14:656-668. (IF 9.986)
17. Yin X, Wang SL, Alolga RN, Mais E, Li P, Yang P, Komatsu S, Qi LW.
Food Chem . 2018 May 30;249:1-7. (IF 6.306)
19. Liu S,Yang L,Mu S,Fu Q
Front Pharmacol . 2018 May 9;9:447. (IF 4.225)
21. Wang XX,Zhang TY,Dao GH,Hu HY
Environ Pollut . 2018 Oct;241:200-211. (IF 6.792)
22. Wang J,Nisar M,Huang C,Pan X,Lin D,Zheng G,Jin H,Chen D,Tian N,Huang Q,Duan Y,Yan Y,Wang K,Wu C,Hu J,Zhang X,Wang X
Exp Mol Med . 2018 Nov 12;50(11):146. (IF 5.418)
23. Tian HP,Sun YH,He L,Yi YF,Gao X,Xu DL
Int Heart J . 2018 Nov 28;59(6):1398-1408. (IF 1.906)
24. Wang XX,Zhang TY,Dao GH,Hu HY
Aquat Toxicol . 2018 Dec;205:66-75. (IF 4.344)
25. Xu S,Zhao X,Liu F,Cao Y,Wang B,Wang X,Yin M,Wang Q,Feng X
Pest Manag Sci . 2018 Dec;74(12):2716-2723. (IF 3.75)
26. Pan X,Song X,Wang C,Cheng T,Luan D,Xu K,Tang B
Theranostics. 2019 Feb 28;9(6):1794-1808. (IF 8.579)
27. Wang QL,Guo C,Qi J,Ma JH,Liu FY,Lin SQ,Zhang CY,Xie WD,Zhuang JJ,Li X
J Asian Nat Prod Res . 2019 Apr;21(4):364-376. (IF 1.345)
30. Zhu Z,Li R,Lv Y,Zeng W
Cryobiology. 2019 Jun;88:1-8. (IF 2.283)
31. Ding XM,Zhao LJ,Qiao HY,Wu SL,Wang XH
Chem Biol Interact. 2019 Jul 1;307:73-81.
32. Wu J,Pan W,Wang C,Dong H,Xing L,Hou J,Fang S,Li H,Yang F,Yu B
Biosci Rep. 2019 Jul 8;39(7). pii: BSR20190304.
33. Xiao X,Cheng Y,Song D,Li X,Hu Y,Lu Z,Wang F,Wang Y
Appl Microbiol Biotechnol. 2019 Aug;103(15):6231-6243.
34. Xiong H,Wang C,Wang Z,Jiang Z,Zhou J,Yao J
J Control Release. 2019 Sep 10;309:145-157. (IF 7.727)
35. Chen B,Li Y,Liu Y,Xu Z
J Cell Physiol. 2019 Nov;234(11):21249-21259. (IF 5.546)
36. Li Y,Zhou T,Su YF,Hu ZY,Wei JJ,Wang W,Liu CY,Zhao K,Zhang HP
Asian J Androl. 2019 Nov 19; (IF 2.448)
37. Liu K,Jing MJ,Liu C,Yan DY,Ma Z,Wang C,Deng Y,Liu W,Xu B
Basic Clin Pharmacol Toxicol. 2019 Dec;125(6):536-547.
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