使用说明：
1. 固定：
    电泳结束后，取凝胶放入约100ml固定液中，在摇床上室温摇动20分钟，摇动速度为60-70rpm。固定
    40分钟以上甚至过夜可以进一步降低背景。
    固定液的配制：依次加入50ml乙醇、10ml乙酸和40ml MilliQ级纯水或双蒸水，混匀后即成100ml固
    定液。
2. 30%乙醇洗涤：
    弃固定液，加入100ml 30%乙醇，在摇床上室温摇动10分钟，摇动速度为60-70rpm。
    30%乙醇的配制：70ml MilliQ级纯水或双蒸水中加入30ml乙醇，混匀后即成100ml 30%乙醇。
3. 水洗涤：
    弃30%乙醇，加入200ml MilliQ级纯水或双蒸水，在摇床上室温摇动10分钟，摇动速度为60-70rpm。
4. 增敏：
    弃水，加入100ml银染增敏液(1X)，在摇床上室温摇动2分钟，摇动速度为60-70rpm。
    银染增敏液(1X)的配制：99ml MilliQ级纯水或双蒸水中加入1ml银染增敏液(100X)，混匀后即为银
    染增敏液(1X)。银染增敏液(1X)配制后需在2小时内使用。
5. 水洗涤(共2次)：
    弃原有溶液，加入200ml MilliQ级纯水或双蒸水，在摇床上室温摇动1分钟，摇动速度为60-70rpm。
    弃水，再加入200ml MilliQ级纯水或双蒸水，在摇床上室温摇动1分钟，摇动速度为60-70rpm。
6. 银染：
    弃水，加入100ml银溶液(1X)，在摇床上室温摇动10分钟，摇动速度为60-70rpm。
    银溶液(1X)的配制：99ml MilliQ级纯水或双蒸水中加入1ml银溶液(100X)，混匀后即为银溶液
    (1X)。银溶液(1X)配制后需在2小时内使用。
7. 水洗涤：
    弃原有溶液，加入100ml MilliQ级纯水或双蒸水，在摇床上室温摇动1-1.5分钟，摇动速度为
    60-70rpm。
    注意：水洗涤的时间不能超过1.5分钟。
8. 显色：
    弃水，加入100ml银染显色液，在摇床上室温摇动3-10分钟，直至出现比较理想的预期蛋白条带，摇
    动速度为60-70rpm。
    银染显色液的配制：90ml MilliQ级纯水或双蒸水中加入10ml银染基本显色液(10X),再加入0.05ml银
    染显色加速液(2000X)，混匀后即为银染显色液。银染显色液配制后需在20分钟内使用。
9. 终止：
    弃银染显色液，加入100ml银染终止液(1X)，在摇床上室温摇动10分钟，摇动速度为60-70rpm。终止
    时有气体产生属正常现象，产生的气体为二氧化碳。
    银染终止液(1X)的配制：95ml MilliQ级纯水或双蒸水中加入5ml银染终止液(20X),混匀后即为银染
    终止液(1X)。银染终止液(1X)配制后宜当天使用。
10. 水洗涤：
    弃银染终止液，加入100ml MilliQ级纯水或双蒸水，在摇床上室温摇动2-5分钟，摇动速度为
    60-70rpm。
11. 保存：
    可在MilliQ级纯水或双蒸水中保存。或采用适当的方式制备成干胶。

常见问题：
1. 背景太深：
   a. 显色时间过长。通常显色反应会在10分钟内结束，显色反应时间过长会导致背景很深。
   b. 洗涤不充分。洗涤时间过短，或洗涤液加入的量不足，或者容器过于狭小导致摇动时溶液不易充
      分混合，或摇动速度过慢，导致混匀不充分。请按照说明书的建议确保各种溶液的用量和作用时
      间，摇床的推荐速度为60-70rpm。
   c. 凝胶中原有的缓冲液等未在固定步骤中去除干净。一方面需确保固定的时间和固定液的用量，另
      一方面对于不是最常用的Bis-Tris缓冲的凝胶需要更长的固定时间以充分去除凝胶中的原有缓冲
      成分，以降低背景。
   d. 水的纯度太低。需使用大于16 MΩ^.cm的高纯度水。
2. 蛋白条带非常浅：
   a. 蛋白的半胱氨酸(Cysteine)残基的含量特别低或几乎没有。半胱氨酸残基的存在对于银染非常重
      要，半胱氨酸残基的含量过低会导致检测灵敏度下降。
   b. 银染后水洗涤时间过长。在银溶液染色时需严格控制水洗涤的时间，水洗涤的时间不能超过1.5分
      钟，否则会导致过多的银离子被洗去，导致检测灵敏度下降。
   c. 上样量不足。本试剂盒检测BSA的灵敏度可以达到0.3ng，对于不同的蛋白检测灵敏度可能不同。
      对于一些蛋白可能需要大于1ng的蛋白量才能被检测到。
   d. 固定步骤后的洗涤不够充分。导致少量乙酸残留，影响后续检测。确保30%乙醇洗涤和水洗涤的用
      量和时间，可以适当延长洗涤时间。
3. 凝胶上出现小点或或其它非蛋白的痕迹：
   a. 凝胶没有充分被溶液浸没。请注意选择大小合适的容器，并加入足量的各种溶液，同时需保持适
      当的混匀速度确保凝胶可以被溶液浸没。
   b. 用于银染的容器没有充分洗涤干净。容器需先用洗涤剂充分洗涤，随后用自来水充分冲洗，最后
      用高纯度水再洗涤数次。该容器最好能专用于银染，并注意避免各种可能的蛋白污染。为确保充
      分洗涤干净，对于耐硝酸的容器，例如玻璃容器，可以在上述洗涤剂及自来水洗涤后用50%硝酸洗
      涤，随后用高纯度水充分洗涤。
   c. 指纹或其它压痕。请注意戴手套操作，切勿直接接触皮肤。操作时请注意尽量勿挤压、折叠或摩
      擦凝胶。
   d. 有金属物质接触凝胶。金属物质例如金属镊子等接触凝胶会出现非特异性痕迹。
4. 在60-70 kD处出现一片模糊的蛋白染色背景：
   皮肤上脱落的角蛋白(keratin)污染了蛋白样品。一方面需注意戴手套操作，另一方面需注意盛放蛋
   白样品的容器盖子尽量不要敞开，甚至在取放蛋白样品时在超净台内进行以避免可能的角蛋白污染。
5. 在凝胶的顶端处出现黄色背景：
   a. 样品中DTT浓度很高。采用其它适当的还原试剂，或者在许可范围内适当减少DTT的用量。
   b. 采用Tris-Glycine-SDS电泳体系。Tris-Glycine-SDS电泳体系中的Glycine会导致背景凝胶的顶端
      出现轻微的黄色背景。换用Tris-Tricine-SDS电泳体系则可显著消除此黄色背景。
6. 银在染色器皿中出现沉淀：
   染色器皿中可能含有残余的洗涤剂或上次银染时的残余试剂。需确保把染色器皿洗涤干净。

     蛋白电泳