使用说明：
1. ER-Tracker Red工作液的配制：
   a. 取少量ER-Tracker Red按照1:1000的比例加入到ER-Tracker Red 稀释液中。例如取1μl ER-Tracker
      Red加入到1ml ER-Tracker Red 稀释液中。混匀后即为ER-Tracker Red工作液。
   b. ER-Tracker Red工作液使用前需37℃预温育。
      注：工作液中ER-Tracker Red的浓度可以根据实际情况进行适当调整，推荐的稀释比例调整范围为
      1:1000-1:3000。为降低背景，在染色效果可以接受的范围内，建议尽量使用较低浓度的ER-Tracker
      Red。
2. 内质网的荧光标记：
   a. 去除细胞培养液，用适量的溶液如HBSS with Ca²⁺ & Mg²⁺ (Hanks' Balanced Salt Solution with
      Ca²⁺ & Mg²⁺)洗涤生长在盖玻片上的细胞。注：HBSS with Ca²⁺ & Mg²⁺ (C0219)可以向碧云天订购；
      对于悬浮细胞的染色可以参考贴壁细胞的染色方法进行。
   b. 去除洗涤液，加入步骤1配制好的并37℃预温育的ER-Tracker Red染色工作液，与细胞37℃共孵育
      15-30分钟。
   c. 去除ER-Tracker Red染色工作液，用细胞培养液洗涤细胞1-2次。
   d. 随后通常用荧光显微镜或激光共聚焦显微镜进行观察。此时可观察到内质网呈明亮的强荧光染色。
   e. 如需固定，可以使用4%甲醛37℃固定2分钟。固定后用适当的洗涤液洗涤2-3次，每次5分钟，随后可
      以进行复染或滴加适当的抗荧光淬灭封片液，最后封片观察。注意：ER-Tracker Red染色的细胞不能
      用Triton X-100通透，Triton X-100通透处理会导致ER-Tracker Red的荧光染色消失。

     细胞组织染色